上海金畔生物科技有限公司代理日本同仁化学 DOJINDO代理商全线产品,欢迎访问官网了解更多信息
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特点:
● 特异性外泌体定位,细胞外不聚集
● 回收率高
● 多种颜色可供选择
试剂盒内含
概述
近年来研究发现,外泌体作为细胞外囊泡(Extracellular vesicle; EV)的一种,与癌症的恶化与转移密切相关, 外泌体相关的研究也逐渐成为了关注的热点。为了研究通过外泌体的细胞间通信,细胞摄入外泌体时的示踪技术非 常重要,然而目前广泛使用的磷脂双分子层的荧光染料存在明显的缺点(1. 染色后外泌体粒径增大。2. 荧光染料自身形成粒子,造成背景增高)。本产品是为了解决这些问题而开发的新型荧光染料,并且有 Green, Red, Deep Red 三种颜色,可满足多重染色在内的各种实验需求。
特点
特点1:外泌体的标记和纯化一步到位
ExoSparkler系列已经对外泌体标记的最佳条件进行摸索并做成了操作手册,试剂盒内包含纯化所需的过滤管,可以简单快捷的进行外泌体的标记和纯化。
纯化方法(未反应染料的去除)的比较
ExoSparklar系列中用于除去未反应染料的过滤管,与以往使用的相同用途的凝胶过滤法相比,能够以更高的回收率纯化外泌体。
回收率 | |||||
过滤管(本试剂盒) | 50% | ||||
凝胶过滤法 | 10% | ||||
※本公司的实施例:通过NTA技术(纳米颗粒跟踪分析)比较提取前后的外泌体粒子数 |
关于使用过滤管进行纯化的有效性,常见问题是:标记后的纯化操作时,过滤膜上有颜色残留,能否确定未反应的染料彻底分离了?详见Q&A。
特点2:多种颜色选择
ExoSparkler系列包括膜 (Mem Dye)和蛋白质 (Protein Dye)荧光染色试剂,各三种颜色 (Green, Red, Deep Red)。
■实验条件
超速离心法纯化的外泌体(蛋白质的量为10 μg)经过各试剂染色后,与HeLa细胞(1.25×104 cells)一起培养24 h,清洗后进行荧光观察。
■观察条件
Green:
Ex: 488 nm / Em: 490-540 nm
Red:
Ex: 561 nm / Em: 570-640 nm
Deep Red:
Ex: 640 nm / Em: 640-760 nm
实验例
实验例:确认外泌体的局部存在
将用ExoSparkler Exosome Protein Labeling Kit-Deep Red(产品名称:EX06,Protein Dye-Deep Red)或ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Red(产品名称:EX02,Mem Dye-Red)染色的外泌体添加到HeLa细胞中,通过与溶酶体染色试剂(绿色)共染确认了外泌体在细胞内的定位。结果证实,用蛋白质或膜染色的外泌体均位于溶酶体中。
观察条件
Protein Dye-Deep Red(紫):Ex:640 nm / Em:640-760 nm
Mem Dye-Red(红色):Ex:561 nm / Em:570-640 nm
溶酶体染色试剂(绿):Ex:488 nm / Em:490-540 nm
实验条件
将用超速离心法提取的外泌体(蛋白质量为5 µg)用每个外泌体染色试剂盒染色,添加到HeLa细胞(0.75×104cells)中,孵育3.5小时后对溶酶体进行染色,观察洗涤后的荧光图像。
产品名称 | 容量 | 货号 | |||
外泌体膜荧光染色试剂盒 | |||||
(绿色)ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Green | 5 samples | EX01 | |||
(红色)ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Red | 5 samples | EX02 | |||
(深红色)ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Deep Red | 5 samples | EX03 | |||
外泌体蛋白荧光染色试剂盒 | |||||
(绿色)ExoSparkler Exosome Protein Labeling Kit-Green | 5 samples | EX04 | |||
(红色)ExoSparkler Exosome Protein Labeling Kit-Red | 5 samples | EX05 | |||
(深红色)ExoSparkler Exosome Protein Labeling Kit-Deep Red | 5 samples | EX06 | |||
*纯化的外泌体(超离心法),蛋白质:1-10 µg/sample,粒子数:10-100×10^8个/sample |
常见问题Q&A
Q1:纯化外泌体建议用什么方法? |
A1:一般我们推荐使用超速离心法纯化外泌体。但是,免疫沉淀法和磁珠法纯化的外泌体也有过成功染色的实例。 目前,聚合物沉淀法纯化的外泌体由于有聚合物的残留会影响外泌体的染色,所以无法使用本试剂盒。 |
Q2:细胞摄取外泌体时使用的是哪种培养基? |
A2:我们公司在做染色后外泌体进入细胞的实验时,使用过MEM(Minimum Essential Medium)和DMEM(Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium)。目前我们公司一直采用的含血清培养基进行外泌体实验,暂时无法推荐无血清培养基。 |
Q3:染色后的外泌体可以长期保存吗? |
A3:染色后的外泌体不建议长期保存。染色后的外泌体最好尽快进行后续实验。 |
Q4:标记后的纯化操作时,过滤膜上有颜色残留,能否确定未反应的染料彻底分离了? |
A5:虽然在过滤膜上可以观察到颜色的残留,但是我们公司通过下面的实验验证了过滤膜上的回收产物里不含未反应的染料。 <实验条件> 超速离心法纯化的①含有外泌体(蛋白质含量10 µg)的缓冲液和②单纯缓冲液,分别按照试剂盒说明书记载的步骤进行染色操作。染色后的产物加入到HeLa细胞中(1.25×104 cells),4小时后进行荧光观察。 结果显示,单纯缓冲液染色后的回收产物加入到细胞后,没有观察到荧光,进而可证明回收产物中没有残留的染料。 |
① Exosome + Buffer
② Only Buffer
Fluorescent images at 4 h incubation
Detection conditions
Green:Ex 488 nm / Em 490 – 540 nm
Red :Ex 561 nm / Em 570 – 640 nm
Deep Red:Ex 640 nm / Em 640 – 760 nm
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特点:
● 特异性外泌体定位,细胞外不聚集
● 回收率高
● 多种颜色可供选择
试剂盒内含
概述
近年来研究发现,外泌体作为细胞外囊泡(Extracellular vesicle; EV)的一种,与癌症的恶化与转移密切相关, 外泌体相关的研究也逐渐成为了关注的热点。为了研究通过外泌体的细胞间通信,细胞摄入外泌体时的示踪技术非 常重要,然而目前广泛使用的磷脂双分子层的荧光染料存在明显的缺点(1. 染色后外泌体粒径增大。2. 荧光染料自身形成粒子,造成背景增高)。本产品是为了解决这些问题而开发的新型荧光染料,并且有 Green, Red, Deep Red 三种颜色,可满足多重染色在内的各种实验需求。
特点
特点1:外泌体的标记和纯化一步到位
ExoSparkler系列已经对外泌体标记的最佳条件进行摸索并做成了操作手册,试剂盒内包含纯化所需的过滤管,可以简单快捷的进行外泌体的标记和纯化。
纯化方法(未反应染料的去除)的比较
ExoSparklar系列中用于除去未反应染料的过滤管,与以往使用的相同用途的凝胶过滤法相比,能够以更高的回收率纯化外泌体。
回收率 | |||||
过滤管(本试剂盒) | 50% | ||||
凝胶过滤法 | 10% | ||||
※本公司的实施例:通过NTA技术(纳米颗粒跟踪分析)比较提取前后的外泌体粒子数 |
关于使用过滤管进行纯化的有效性,常见问题是:标记后的纯化操作时,过滤膜上有颜色残留,能否确定未反应的染料彻底分离了?详见Q&A。
特点2:多种颜色选择
ExoSparkler系列包括膜 (Mem Dye)和蛋白质 (Protein Dye)荧光染色试剂,各三种颜色 (Green, Red, Deep Red)。
■实验条件
超速离心法纯化的外泌体(蛋白质的量为10 μg)经过各试剂染色后,与HeLa细胞(1.25×104 cells)一起培养24 h,清洗后进行荧光观察。
■观察条件
Green:
Ex: 488 nm / Em: 490-540 nm
Red:
Ex: 561 nm / Em: 570-640 nm
Deep Red:
Ex: 640 nm / Em: 640-760 nm
实验例
实验例:确认外泌体的局部存在
将用ExoSparkler Exosome Protein Labeling Kit-Deep Red(产品名称:EX06,Protein Dye-Deep Red)或ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Red(产品名称:EX02,Mem Dye-Red)染色的外泌体添加到HeLa细胞中,通过与溶酶体染色试剂(绿色)共染确认了外泌体在细胞内的定位。结果证实,用蛋白质或膜染色的外泌体均位于溶酶体中。
观察条件
Protein Dye-Deep Red(紫):Ex:640 nm / Em:640-760 nm
Mem Dye-Red(红色):Ex:561 nm / Em:570-640 nm
溶酶体染色试剂(绿):Ex:488 nm / Em:490-540 nm
实验条件
将用超速离心法提取的外泌体(蛋白质量为5 µg)用每个外泌体染色试剂盒染色,添加到HeLa细胞(0.75×104cells)中,孵育3.5小时后对溶酶体进行染色,观察洗涤后的荧光图像。
产品名称 | 容量 | 货号 | |||
外泌体膜荧光染色试剂盒 | |||||
(绿色)ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Green | 5 samples | EX01 | |||
(红色)ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Red | 5 samples | EX02 | |||
(深红色)ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Deep Red | 5 samples | EX03 | |||
外泌体蛋白荧光染色试剂盒 | |||||
(绿色)ExoSparkler Exosome Protein Labeling Kit-Green | 5 samples | EX04 | |||
(红色)ExoSparkler Exosome Protein Labeling Kit-Red | 5 samples | EX05 | |||
(深红色)ExoSparkler Exosome Protein Labeling Kit-Deep Red | 5 samples | EX06 | |||
*纯化的外泌体(超离心法),蛋白质:1-10 µg/sample,粒子数:10-100×10^8个/sample |
常见问题Q&A
Q1:纯化外泌体建议用什么方法? |
A1:一般我们推荐使用超速离心法纯化外泌体。但是,免疫沉淀法和磁珠法纯化的外泌体也有过成功染色的实例。 目前,聚合物沉淀法纯化的外泌体由于有聚合物的残留会影响外泌体的染色,所以无法使用本试剂盒。 |
Q2:细胞摄取外泌体时使用的是哪种培养基? |
A2:我们公司在做染色后外泌体进入细胞的实验时,使用过MEM(Minimum Essential Medium)和DMEM(Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium)。目前我们公司一直采用的含血清培养基进行外泌体实验,暂时无法推荐无血清培养基。 |
Q3:染色后的外泌体可以长期保存吗? |
A3:染色后的外泌体不建议长期保存。染色后的外泌体最好尽快进行后续实验。 |
Q4:标记后的纯化操作时,过滤膜上有颜色残留,能否确定未反应的染料彻底分离了? |
A5:虽然在过滤膜上可以观察到颜色的残留,但是我们公司通过下面的实验验证了过滤膜上的回收产物里不含未反应的染料。 <实验条件> 超速离心法纯化的①含有外泌体(蛋白质含量10 µg)的缓冲液和②单纯缓冲液,分别按照试剂盒说明书记载的步骤进行染色操作。染色后的产物加入到HeLa细胞中(1.25×104 cells),4小时后进行荧光观察。 结果显示,单纯缓冲液染色后的回收产物加入到细胞后,没有观察到荧光,进而可证明回收产物中没有残留的染料。 |
① Exosome + Buffer
② Only Buffer
Fluorescent images at 4 h incubation
Detection conditions
Green:Ex 488 nm / Em 490 – 540 nm
Red :Ex 561 nm / Em 570 – 640 nm
Deep Red:Ex 640 nm / Em 640 – 760 nm
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特点:
● 特异性外泌体定位,细胞外不聚集
● 回收率高
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NO.1. ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Green 外泌体膜染色试剂-绿色
NO.2. ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Red 外泌体膜染色试剂-红色
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NO.4. Mitophagy Detection Kit 线粒体自噬检测
NO.5. FerroOrange 细胞亚铁离子检测
试剂盒内含
概述
近年来研究发现,外泌体作为细胞外囊泡(Extracellular vesicle; EV)的一种,与癌症的恶化与转移密切相关, 外泌体相关的研究也逐渐成为了关注的热点。为了研究通过外泌体的细胞间通信,细胞摄入外泌体时的示踪技术非常重要,然而目前广泛使用的磷脂双分子层的荧光染料存在明显的缺点(1. 染色后外泌体粒径增大。2. 荧光染料自身形成粒子,造成背景增高)。本产品是为了解决这些问题而开发的新型荧光染料,并且有 Green, Red, Deep Red 三种颜色,可满足多重染色在内的各种实验需求。
特点
特点1:外泌体的标记和纯化一步到位
ExoSparkler系列已经对外泌体标记的最佳条件进行摸索并做成了操作手册,试剂盒内包含纯化所需的过滤管,可以简单快捷的进行外泌体的标记和纯化。
纯化方法(未反应染料的去除)的比较
ExoSparklar系列中用于除去未反应染料的过滤管,与以往使用的相同用途的凝胶过滤法相比,能够以更高的回收率纯化外泌体。
回收率 | |||||
过滤管(本试剂盒) | 50% | ||||
凝胶过滤法 | 10% | ||||
※本公司的实施例:通过NTA技术(纳米颗粒跟踪分析)比较提取前后的外泌体粒子数 |
关于使用过滤管进行纯化的有效性,常见问题是:标记后的纯化操作时,过滤膜上有颜色残留,能否确定未反应的染料彻底分离了?详见Q&A。
特点2:多种颜色选择
ExoSparkler系列包括膜 (Mem Dye)和蛋白质 (Protein Dye)荧光染色试剂,各三种颜色 (Green, Red, Deep Red)。
■实验条件
超速离心法纯化的外泌体(蛋白质的量为10 μg)经过各试剂染色后,与HeLa细胞(1.25×104 cells)一起培养24 h,清洗后进行荧光观察。
■观察条件
Green:
Ex: 488 nm / Em: 490-540 nm
Red:
Ex: 561 nm / Em: 570-640 nm
Deep Red:
Ex: 640 nm / Em: 640-760 nm
实验例
实验例:确认外泌体的局部存在
将用ExoSparkler Exosome Protein Labeling Kit-Deep Red(产品名称:EX06,Protein Dye-Deep Red)或ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Red(产品名称:EX02,Mem Dye-Red)染色的外泌体添加到HeLa细胞中,通过与溶酶体染色试剂(绿色)共染确认了外泌体在细胞内的定位。结果证实,用蛋白质或膜染色的外泌体均位于溶酶体中。
观察条件
Protein Dye-Deep Red(紫):Ex:640 nm / Em:640-760 nm
Mem Dye-Red(红色):Ex:561 nm / Em:570-640 nm
溶酶体染色试剂(绿):Ex:488 nm / Em:490-540 nm
实验条件
将用超速离心法提取的外泌体(蛋白质量为5 µg)用每个外泌体染色试剂盒染色,添加到HeLa细胞(0.75×104cells)中,孵育3.5小时后对溶酶体进行染色,观察洗涤后的荧光图像。
产品名称 | 容量 | 货号 | |||
外泌体膜荧光染色试剂盒 | |||||
(绿色)ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Green | 5 samples | EX01 | |||
(红色)ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Red | 5 samples | EX02 | |||
(深红色)ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Deep Red | 5 samples | EX03 | |||
外泌体蛋白荧光染色试剂盒 | |||||
(绿色)ExoSparkler Exosome Protein Labeling Kit-Green | 5 samples | EX04 | |||
(红色)ExoSparkler Exosome Protein Labeling Kit-Red | 5 samples | EX05 | |||
(深红色)ExoSparkler Exosome Protein Labeling Kit-Deep Red | 5 samples | EX06 | |||
*纯化的外泌体(超离心法),蛋白质:1-10 µg/sample,粒子数:10-100×10^8个/sample |
常见问题Q&A
Q1:纯化外泌体建议用什么方法? |
A1:一般我们推荐使用超速离心法纯化外泌体。但是,免疫沉淀法和磁珠法纯化的外泌体也有过成功染色的实例。 目前,聚合物沉淀法纯化的外泌体由于有聚合物的残留会影响外泌体的染色,所以无法使用本试剂盒。 |
Q2:细胞摄取外泌体时使用的是哪种培养基? |
A2:我们公司在做染色后外泌体进入细胞的实验时,使用过MEM(Minimum Essential Medium)和DMEM(Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium)。目前我们公司一直采用的含血清培养基进行外泌体实验,暂时无法推荐无血清培养基。 |
Q3:染色后的外泌体可以长期保存吗? |
A3:染色后的外泌体不建议长期保存。染色后的外泌体最好尽快进行后续实验。 |
Q4:标记后的纯化操作时,过滤膜上有颜色残留,能否确定未反应的染料彻底分离了? |
A5:虽然在过滤膜上可以观察到颜色的残留,但是我们公司通过下面的实验验证了过滤膜上的回收产物里不含未反应的染料。 <实验条件> 超速离心法纯化的①含有外泌体(蛋白质含量10 µg)的缓冲液和②单纯缓冲液,分别按照试剂盒说明书记载的步骤进行染色操作。染色后的产物加入到HeLa细胞中(1.25×104 cells),4小时后进行荧光观察。 结果显示,单纯缓冲液染色后的回收产物加入到细胞后,没有观察到荧光,进而可证明回收产物中没有残留的染料。 |
① Exosome + Buffer
② Only Buffer
Fluorescent images at 4 h incubation
Detection conditions
Green:Ex 488 nm / Em 490 – 540 nm
Red :Ex 561 nm / Em 570 – 640 nm
Deep Red:Ex 640 nm / Em 640 – 760 nm
DAKO丹科Protein Block, Serum-Free, Liquid form, 110
DAKO丹科Protein Block, Serum-Free, Liquid form, 110 mL
简单介绍:Protein Block, Serum Free, Blocking, Unconjugated, Liquid form, Immunohistochemistry, 110 mL
Code No : X0909
DAKO抗体是丹麦的著名抗体生产商,提供世界上质量zui稳定,zui为经典的抗体。其主要产品涉及免疫化学、流式细胞,免疫组织化学,原位杂交,微生物检验等。DAKO的不同显色系统,Envision,LSAB和免疫细胞化学的CAS,GenpointTM和用于分子病理学的PNA=ISH试剂盒,和用于ELISA的AMPAKTM/AmpliQ是其在生物化学研究中的革新产品 。
Invitrogen Dynabeads Protein G(Dynabeads蛋白G)
Invitrogen Dynabeads Protein G(Dynabeads蛋白G)
Dynabeads® 蛋白G是一种的海藻糖和琼脂糖浆液替代物,可用于免疫沉淀。在免疫沉淀中,Dynabeads® 蛋白G:
Invitrogen Dynabeads Protein G(Dynabeads蛋白G)
详细信息:
• 将实验方案时间缩短至30分钟。
• 显著降低了非特异性结合造成的背景
• 保持蛋白质复合物的完整性,对珍贵的蛋白质无物理压力。
Dynabeads® 蛋白G广泛应用于小规模IgG纯化和抗体标记、免疫沉淀 (IP)、染色质免疫沉淀 (ChIP) 及蛋白质分离。磁性分离技术快速且温和,对靶蛋白的物理压力极小。因此可用于分离和浓缩易分解的成分,这些成分通常会在漫长的孵育过程中解离或被蛋白酶破坏。天然蛋白质的构象和完整的大蛋白复合体将受到保护。
表面偶联有蛋白G的Dynabeads® 可分离大多数哺乳动物免疫球蛋白 (Ig)。参见下文图像和数据中的结合强度表,查看不同种属和亚类的结合强度。捕获的Ig量取决于起始样品中Ig的浓度以及Ig的类型和来源。
该产品在可重复性和自动化能力方面秉承了Dynal的高标准,为您的分析提供了可靠性。
优点和特点:
• 不使用离心柱,无需离心或耗时的样品预处理
• 小规模IgG纯化和免疫沉淀的*选择
订购信息:
货号 规格
10003D 1ml
10004D 5ml
10009D 50ml
Pierce BCA蛋白浓度测定试剂盒BCA Protein Assay Kit
Roche代理 琼脂糖凝胶G蛋白填料Protein G-Agarose罗氏产品供应
伯乐蛋白测定试剂盒Quick Start Bradford Protein Assay Kit
伯乐蛋白测定试剂盒Quick Start Bradford Protein Assay Kit
Colorimetric assay kit, includes 1x dye reagent (1 L), BSA standard (5 x 2 mg/ml); 200 standard assays or 4,000 microplate assays
双染蛋白MARKERPrecision Plus Protein™ Dual Color Stand
500 μl, mixture of 10 recombinant proteins (10–250 kD), 8 blue-stained bands, and 2 pink reference bands (25 and 75 kD), 50 applications
MW size range, kD | 10–250 |
Stain type | Dual Color |
Volume, µl | 500 |
Total number of applications | 50 |
Shelf life at –20°C, months | 12 |
Loading volume on mini gels, µl | for Coomassie staining, 10 |
Loading volume on mini gels, µl | for fluorescent blot detection, 5 of 1:10 dilution |
Application Type | |
Monitoring electrophoretic separation for SDS-PAGE gels | Yes |
Molecular weight sizing on SDS-PAGE gels | Yes |
Monitoring blot transfer efficiency | Yes |
Fluorescence blots | Yes |
Molecular weight sizing on | N/A |
Loading Volume on Mini Gels | |
For Coomassie staining, µl | N/A |
For stain-free gels, µl | N/A |
For silver staining, µl | N/A |
For SYPRO Ruby staining, µl | N/A |
For blot development, µl | N/A |
StrepTactin conjugate working dilutions for colorimetric blot development | N/A |
StrepTactin conjugate working dilutions for chemiluminescence blot development | N/A |
The Precision Plus Protein™ Dual Color standards are a mixture of ten recombinant proteins (10–250 kD), including eight blue-stained bands and two pink reference bands (25 and 75 kD).
双染蛋白MARKERPrecision Plus Protein™ Dual Color Stand
Applications and Uses
Choose Precision Plus Protein Dual Color standards for SDS-PAGE:
More Information
Loading buffer:
30% (w/v) glycerol, 2% SDS, 62.5 mM Tris, pH 6.8, 50 mM DTT, 5 mM EDTA, 0.02% NaN3, 0.01% bromophenol blue
santacruz G蛋白PLUS-琼脂糖Protein G PLUS-Agarose
santacruz G蛋白PLUS-琼脂糖Protein G PLUS-Agarose
SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY, INC.
Protein G PLUS-Agarose
Immunoprecipitation Reagent: sc-2002
Santa Cruz Biotechnology, Inc. 1.800.457.3801 831.457.3800 831.457.3801 Europe +00800 4573 8000 49 6221 4503 0 www.scbt.com
PRODUCT
Protein G PLUS is provided as an agarose conjugate for use in immunoprecipitation
only. The product is provided as 0.5 ml agarose in 2.0 ml PBS buffer
with 0.02% azide. Protein G PLUS-Agarose is pre-blocked with BSA to reduce
non-specific immunoglobulin binding. Sufficient product is provided for 100
immunoprecipitation reactions, to be used at 20 μl resuspended volume per
reaction.
SPECIFICITY
Protein G PLUS-Agarose is suitable for immunoprecipitation of mouse IgG1,
IgG2a, IgG2b and IgG3, rat IgG1, IgG2a, IgG2b and IgG2c, rabbit and goat polyclonal
Abs, and human IgG1, IgG2, IgG3 and IgG4.
PROCEDURE
• Incubate cultured cells (80-90% confluent monolayer in 100 mm cell culture
plate, or approximay 2-5 x 107 suspension cells in flask) in methioninefree
medium containing 5% dialyzed fetal calf serum for 1 hour at 37° C.
The same procedure can be used for cells labeled with other radioactive
amino acids (e.g., 14C or 3H) or with γ32P-orthophosphate. Cell labeling must
be carried out in medium lacking the relevant amino acid or in phosphatefree
medium.
• Remove medium and replace with 3 ml methionine-free medium containing
5% dialyzed fetal calf serum and 100 μCi/ml 35S-methionine. Incubate 1
hour at 37° C. For some proteins a longer labeling period (up to 18 hours)
is preferable.
• Carefully remove radioactive medium with Pasteur pipette and wash cell
monolayer with PBS.
• Add 3 ml ice cold RIPA buffer to cell monolayer and incubate at 4° C for
10 minutes. For suspension cells, add the RIPA buffer to washed cell pellet
in a 15 ml conical centrifuge tube.
• Disrupt cells by repeated aspiration through a 21 gauge needle and transfer
to a 15 ml conical centrifuge tube.
• Wash cell culture plate with additional 1.0 ml ice cold RIPA buffer and
combine with original extract.
• Pellet cellular debris by centrifugation at 10,000 xg for 10 minutes at 4° C.
Transfer supernatant to a fresh 15 ml conical centrifuge tube on ice.
Preclear lysate (optional step) by adding 1.0 μg of the appropriate control
IgG (normal mouse, rat, rabbit or goat IgG, corresponding to the host
species of the primary antibody), together with 20 μl of resuspended
volume of Protein G PLUS-Agarose. Incubate at 4° C for 30 minutes.
• Pellet beads by centrifugation at 2,500 rpm (approximay 1,000 xg) for
5 minutes at 4° C. Transfer supernatant (cell lysate) to a fresh 15 ml conical
centrifuge tube on ice.
• Transfer 1 ml of the above cell lysate, or approximay 100-500 μg total
cellular protein, to a 1.5 ml microcentrifuge tube. Add 1-10 μl (i.e., 0.2-2 μg)
primary antibody (optimal antibody concentration should be determined by
titration) and incubate for 1 hour at 4° C.
• Add 20 μl of resuspended volume of Protein G PLUS-Agarose. Cap tubes
and incubate at 4° C on a rocker platform or rotating device for 1 hour to
overnight.
• Collect immunoprecipitates by centrifugation at 2,500 rpm (approximay
1,000 xg) for 5 minutes at 4° C. Carefully aspirate and discard radioactive
supernatant.
• Wash pellet 4 times with 1.0 ml RIPA buffer (more stringent) or PBS (less
stringent), each time repeating centrifugation step above.
• After final wash, aspirate and discard supernatant and resuspend pellet in
40 μl of 1x electrophoresis sample buffer.
• Boil samples for 2–3 minutes and analyze 20 μl aliquots by SDS-PAGE and
autoradiography. Unused samples may be stored at -20° C.
• Optional: After boiling, samples may be centrifuged to pellet the agarose
beads followed by SDS-PAGE analysis of the supernatant.
SELECT PRODUCT CITATIONS
1. Medema, R., et al. 1998. p21waf1 can block cells at two points in the cell
cycle, but does not interfere with processive DNA-replication or stressactivated
kinases. Oncogene 16: 431-441.
2. Marzo, I., et al. 1998. Bax and adenine nucleotide translocator cooperate
in the mitochondrial control of apoptosis. Science 281: 2027-2031.
3. Song, Y., et al. 2011. Ligand-dependent corepressor acts as a novel corepressor
of thyroid hormone receptor and represses hepatic lipogenesis in
mice. J. Hepatol. 56: 248-254.
4. Beard, R.S., et al. 2012. Metabotropic glutamate receptor 5 mediates
phosphorylation of vascular endothelial cadherin and nuclear localization
of β-catenin in response to homocysteine. Vascul. Pharmacol. 56: 159-167.
STORAGE
Store at 4° C, do not freeze; stable for one year from the date of shipment.
RESEARCH USE
For research use only, not for use in diagnostic procedures.
Immunoprecipitation agarose conjugates are pre-blocked with BSA to reduce non-specific immunoglobulin
binding and are provided at a concentration (0.5 ml agarose/2.0 ml) suitable for use at 20 μl per
immunoprecipitation reaction. Number of reactions: 100.
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容 量 | メーカー希望 小売価格 |
富士フイルム 和光純薬 |
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1 g | ¥10,300 | 341-08121 |
300 mg/10mL(水)
1) D. L. Foster and R. H. Fillingame, "Energy-transducing H+-ATPase of Escherichia coli. Purification, Reconstitution, and Subunit Composition", J. Biol. Chem., 1979, 254, 8230 .
2) H. Hirata, N. Sone, M. Yoshida and Y. Kagawa, "Solubilization and Partial Purification of Alanine Carrier from Membranes of a Thermophilic Bacterium and its Reconstitution into Functional Vesicles", Biochem. Biophys. Res. Commun., 1976, 69, 665.
3) J. C. Norton, S. E. Holt, W. E. Wright and J. W. Shay, "Enhanced Detection of Human Telomerase Activity", DNA Cell Biol., 1998, 17, 217.
4) M. B. Jones and J. C. Garrison, "Instability of the G-Protein -β-5-subunit in Detergent", Anal. Biochem., 1999, 268, 126.
cmc(臨界ミセル濃度)はタンパク質可溶化にどのように関係するのですか。
性状: | 本品は、白色粉末で水に溶ける。 |
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純度(HPLC): | 98.0% 以上 |
水溶状: | 試験適合 |
水分: | 3.0~6.0% |
吸光度: | 0.065以下(280 nm) |
IRスペクトル: | 試験適合 |
取扱条件: 吸湿注意 |
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容 量 | メーカー希望 小売価格 |
富士フイルム 和光純薬 |
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5 samples | ¥21,400 | 344-09691 |
精製済エクソソームを染色することができます。
5 samples | ・Protein Dye-Green ・Filtration tube |
×1 ×5 |
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ExoSparkler シリーズは、エクソソームの標識に最適化したプロトコルに加え、蛍光標識後の未反応色素を除去できるフィルトレーションチューブを同梱しているため、簡単な操作で蛍光標識エクソソームを調製できます。
精製手法(未反応色素の除去)の比較
ExoSparklarシリーズで未反応色素の除去に使用しているフィルトレーションチューブは、同用途で従来から用いられているゲルろ過法と比較して、高い回収率でエクソソームを精製することが可能です。
回収率※ | |
フィルトレーションチューブ(本キット) | 50% 程度 |
ゲルろ過法 | 10% 程度 |
※ 小社での実施例:精製前後のエクソソーム粒子数をNTA(ナノ粒子トラッキング解析)で比較 |
フィルトレーションチューブを用いた精製の有効性確認の蛍光画像をよくある質問:標識後の精製操作でフィルターは着色していますが、未反応の色素は分離できていますか?に掲載しています。
技術情報のデータは京都大学大学院工学研究科高分子化学専攻 秋吉一成先生のご支援のもと取得いたしました。 |
細胞外小胞、エクソソームの特性と機能 |
推奨されるエクソソームの精製法はありますか?
超遠心法での精製を推奨しておりますが、免疫沈降法や磁気ビーズで精製したエクソソームの染色実績もございます。
また、超遠心法と同等の回収実績のある、ExoIsolator Exosome Isolation Kit(EX10)もご利用いただけます。
なお、ポリマー沈殿法で精製したエクソソームは下記の理由により、残存するポリマーの影響を受けるため、本キットでの染色はできません。
1)未反応色素の精製工程で使用するフィルトレーションチューブにポリマーがつまり、精製できなくなる可能性がございます。
2)ポリマーがエクソソームと相互作用し、エクソソームの膜電位が変わる可能性がございます。膜電位が変わると、細胞取り込みアッセイに標識エクソソームを使用する場合、細胞内動態が変化する恐れがございます。
標識後の精製操作でフィルターは着色していますが、未反応の色素は分離できていますか?
未反応の色素はフィルターに保持されるために着色が見られますが、小社では以下の実験でフィルター上の回収物に未反応色素が含まれないことを確認しております。
<実験条件>
超遠心法で精製した ①エクソソーム(タンパク質量として10 µg)のバッファー溶液 または ②バッファーのみ を各キットのプロトコルに従って染色操作したのち、得られた回収物をHeLa細胞(1.25×104 cells)に添加して、4時間後の蛍光画像を観察しました。
結果として、バッファーのみで得られた回収物は細胞へ添加しても蛍光輝点が観察されず、回収物に未反応の色素が残っていないことを確認しました。
①エクソソーム+バッファーをキットで処理した場合
細胞へ添加後(4h)の蛍光画像
②バッファーのみをキットで処理した場合
細胞へ添加後(4h)の蛍光画像
■ 検出条件
Green:Ex 488 nm / Em 490 – 540 nm
Red :Ex 561 nm / Em 570 – 640 nm
Deep Red:Ex 640 nm / Em 640 – 760 nm
染色後のエクソソームは保存できますか。
染色後のエクソソームの保存は推奨しておりません。
エクソソームの染色後はできるだけ早く実験にご使用ください。
エクソソームの取込実験で使用実績のある培地を教えてください。
小社では染色後のエクソソームを用いた細胞への取り込み実験において、
MEM(Minimum Essential Medium)ならびにDMEM(Dulbecco's Modified Eagle's Medium)での実績がございます。
なお、ExoSparklerシリーズは血清含有培地中での取込実験に最適化しているため、
無血清培地中で使用することはお勧めできません。
1sampleあたりの染色できるエクソソーム量(タンパク質量、粒子数)を教えてください。
1sampleあたりのエクソソーム量(タンパク質量、粒子数)は以下の通りです。
精製済エクソソーム(超遠心法)として、タンパク質:1-10 μg/sample, 粒子数 10-100x 108 個/sample
エクソソーム以外に夾雑物が含まれる場合、夾雑物も染色されますか?
はい。エクソソーム以外のタンパク質等の夾雑物が含まれると、夾雑物も染色されてしまいます。
そのため、精製したエクソソームをご準備ください。
精製方法については、「推奨されるエクソソームの精製法はありますか?」をご参照ください。
保存条件: 冷蔵 |
この製品に関連する研究では、下記の関連製品も使われています。
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容 量 | メーカー希望 小売価格 |
富士フイルム 和光純薬 |
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5 samples | ¥21,400 | 347-09701 |
精製済エクソソームを染色することができます。
5 samples | ・Protein Dye-Red ・Filtration tube |
×1 ×5 |
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ExoSparkler シリーズは、エクソソームの標識に最適化したプロトコルに加え、蛍光標識後の未反応色素を除去できるフィルトレーションチューブを同梱しているため、簡単な操作で蛍光標識エクソソームを調製できます。
精製手法(未反応色素の除去)の比較
ExoSparklarシリーズで未反応色素の除去に使用しているフィルトレーションチューブは、同用途で従来から用いられているゲルろ過法と比較して、高い回収率でエクソソームを精製することが可能です。
回収率※ | |
フィルトレーションチューブ(本キット) | 50% 程度 |
ゲルろ過法 | 10% 程度 |
※ 小社での実施例:精製前後のエクソソーム粒子数をNTA(ナノ粒子トラッキング解析)で比較 |
フィルトレーションチューブを用いた精製の有効性確認の蛍光画像をよくある質問:標識後の精製操作でフィルターは着色していますが、未反応の色素は分離できていますか?に掲載しています。
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細胞外小胞、エクソソームの特性と機能 |
推奨されるエクソソームの精製法はありますか?
超遠心法での精製を推奨しておりますが、免疫沈降法や磁気ビーズで精製したエクソソームの染色実績もございます。
また、超遠心法と同等の回収実績のある、ExoIsolator Exosome Isolation Kit(EX10)もご利用いただけます。
なお、ポリマー沈殿法で精製したエクソソームは下記の理由により、残存するポリマーの影響を受けるため、本キットでの染色はできません。
1)未反応色素の精製工程で使用するフィルトレーションチューブにポリマーがつまり、精製できなくなる可能性がございます。
2)ポリマーがエクソソームと相互作用し、エクソソームの膜電位が変わる可能性がございます。膜電位が変わると、細胞取り込みアッセイに標識エクソソームを使用する場合、細胞内動態が変化する恐れがございます。
標識後の精製操作でフィルターは着色していますが、未反応の色素は分離できていますか?
未反応の色素はフィルターに保持されるために着色が見られますが、小社では以下の実験でフィルター上の回収物に未反応色素が含まれないことを確認しております。
<実験条件>
超遠心法で精製した ①エクソソーム(タンパク質量として10 µg)のバッファー溶液 または ②バッファーのみ を各キットのプロトコルに従って染色操作したのち、得られた回収物をHeLa細胞(1.25×104 cells)に添加して、4時間後の蛍光画像を観察しました。
結果として、バッファーのみで得られた回収物は細胞へ添加しても蛍光輝点が観察されず、回収物に未反応の色素が残っていないことを確認しました。
①エクソソーム+バッファーをキットで処理した場合
細胞へ添加後(4h)の蛍光画像
②バッファーのみをキットで処理した場合
細胞へ添加後(4h)の蛍光画像
■ 検出条件
Green:Ex 488 nm / Em 490 – 540 nm
Red :Ex 561 nm / Em 570 – 640 nm
Deep Red:Ex 640 nm / Em 640 – 760 nm
染色後のエクソソームは保存できますか。
染色後のエクソソームの保存は推奨しておりません。
エクソソームの染色後はできるだけ早く実験にご使用ください。
エクソソームの取込実験で使用実績のある培地を教えてください。
小社では染色後のエクソソームを用いた細胞への取り込み実験において、
MEM(Minimum Essential Medium)ならびにDMEM(Dulbecco's Modified Eagle's Medium)での実績がございます。
なお、ExoSparklerシリーズは血清含有培地中での取込実験に最適化しているため、
無血清培地中で使用することはお勧めできません。
1sampleあたりの染色できるエクソソーム量(タンパク質量、粒子数)を教えてください。
1sampleあたりのエクソソーム量(タンパク質量、粒子数)は以下の通りです。
精製済エクソソーム(超遠心法)として、タンパク質:1-10 μg/sample, 粒子数 10-100x 108 個/sample
エクソソーム以外に夾雑物が含まれる場合、夾雑物も染色されますか?
はい。エクソソーム以外のタンパク質等の夾雑物が含まれると、夾雑物も染色されてしまいます。
そのため、精製したエクソソームをご準備ください。
精製方法については、「推奨されるエクソソームの精製法はありますか?」をご参照ください。
保存条件: 冷蔵 , 取扱条件: 吸湿注意 |
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回収率※ | |
フィルトレーションチューブ(本キット) | 50% 程度 |
ゲルろ過法 | 10% 程度 |
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超遠心法で精製した ①エクソソーム(タンパク質量として10 µg)のバッファー溶液 または ②バッファーのみ を各キットのプロトコルに従って染色操作したのち、得られた回収物をHeLa細胞(1.25×104 cells)に添加して、4時間後の蛍光画像を観察しました。
結果として、バッファーのみで得られた回収物は細胞へ添加しても蛍光輝点が観察されず、回収物に未反応の色素が残っていないことを確認しました。
①エクソソーム+バッファーをキットで処理した場合
細胞へ添加後(4h)の蛍光画像
②バッファーのみをキットで処理した場合
細胞へ添加後(4h)の蛍光画像
■ 検出条件
Green:Ex 488 nm / Em 490 – 540 nm
Red :Ex 561 nm / Em 570 – 640 nm
Deep Red:Ex 640 nm / Em 640 – 760 nm
染色後のエクソソームは保存できますか。
染色後のエクソソームの保存は推奨しておりません。
エクソソームの染色後はできるだけ早く実験にご使用ください。
エクソソームの取込実験で使用実績のある培地を教えてください。
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MEM(Minimum Essential Medium)ならびにDMEM(Dulbecco's Modified Eagle's Medium)での実績がございます。
なお、ExoSparklerシリーズは血清含有培地中での取込実験に最適化しているため、
無血清培地中で使用することはお勧めできません。
エクソソーム以外に夾雑物が含まれる場合、夾雑物も染色されますか?
はい。エクソソーム以外のタンパク質等の夾雑物が含まれると、夾雑物も染色されてしまいます。
そのため、精製したエクソソームをご準備ください。
精製方法については、「推奨されるエクソソームの精製法はありますか?」をご参照ください。
1sampleあたりの染色できるエクソソーム量(タンパク質量、粒子数)を教えてください。
1sampleあたりのエクソソーム量(タンパク質量、粒子数)は以下の通りです。
精製済エクソソーム(超遠心法)として、タンパク質:1-10 μg/sample, 粒子数 10-100x 108 個/sample
保存条件: 冷蔵 , 取扱条件: 吸湿注意 |
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富士フイルム 和光純薬 |
---|---|---|
500 tests | ¥11,600 | 347-90151 |
2500 tests | ¥30,500 | 343-90153 |
500 tests | [500回用] ・CBB Solution ・Standard BSA Solution (4,000 μg/ml) |
100 ml x2 1.5 ml x1 |
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2500 tests | [2500回用] ・CBB Solution ・Standard BSA Solution (4,000 μg/ml) |
1,000 ml x1 1.5 ml x2 |
・20 μL, 200 μLマイクロピペッター(可変式)
・マイクロプレートリーダー(600 nmフィルター)
・96穴マイクロプレート
・1.5 mLチューブ(マイクロプレートリーダーが無い場合は、吸光光度計でも測定できます。)
たんぱく質の定量範囲
それぞれBSA換算で
Protein Quantification Kit-Rapidはstandard法で10 μg/mL~2000 μg/mLmicro法で1 μg/mL~50 μg/mLです。
Protein Quantification Kit-Wide rangeは100 μg/mL~5000 μg/mLになります。
測定原理を教えて
RapidはBradford法を採用しています。
Coomassie Brilliant Blue G (CBB) をタンパク質検出試薬として用いており、高感度で反応が早いという特長を持っています。
Coomassie Brilliant Blue G はタンパク質に作用し、酸性条件で青色に呈色します。(λmax= 595 nm付近)
しかも呈色反応は1分以内に終了し、生じた色素は30分以上安定です。
この方法を使うことにより数分程度でタンパク質の定量を行うことが出来ます。
保存条件: 冷蔵 | |
危険・有害 シンボルマーク |
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AllPrep DNA/RNA/Protein Mini Kit /DNA RNA 蛋白质纯化试剂盒
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Clontech | 632436 | rDsRed2 Protein | 100 μg | 4,430(暂不销售) |
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页面更新:2021-02-04 14:02:58
上海金畔生物科技有限公司代理New England Biolabs(NEB)酶试剂全线产品,欢迎访问官网了解更多产品信息和订购。
The Monarch Protein Separation Solution, supplied as a component of the Monarch HMW DNA Extraction Kit for Tissue (NEB #T3060), is a salt-based solution that is optimized to ensure proteins in tissue and bacteria samples are easily removed during the phase separation of the Monarch HMW DNA Extraction workflow. It is supplied in two bottles of 18 ml.
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页面更新:2019-11-19 14:20:36