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特点:
● 荧光素标记的产品可以在大约2小时内制备。
● 可以标记分子量为50,000或更高的蛋白质。
● 可以标记50至200μg的蛋白质。
● 可以通过使用过滤管的分离操作以高回收率获得标记物质。
● 荧光素标记的物体可以与所附的存储溶液一起存储。
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NO.2. Peroxidase Labeling Kit – NH2 过氧化物酶标记试剂盒-氨基
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NO.5. Cytotoxicity LDH Assay Kit-WST 乳酸脱氢酶(LDH)检测
试剂盒内含
产品概述
该试剂盒主要用于制备用荧光素标记的蛋白质,如免疫转染中的IgG和胞内蛋白示踪。氨基反应型荧光素是试剂盒的成分之一,它含有琥珀酰亚胺基(NHS),能与蛋白质或者其它分子的氨基反应。该试剂盒中包含了标记所需的全部试剂,包括Storage buffer。每一管荧光素最多能够标记200μg的IgG,每个IgG分子可与4-6个荧光素分子共价结合。该试剂盒还包含一个缓冲液交换系统,因此含有氨基缓冲液的样品也能用此试剂盒来标记。虽然用膜来过滤有时会导致IgG聚集,但是试剂盒中的缓冲液交换系统能够防止标记过程中聚集现象的发生。用该试剂盒标记的抗体在4℃下能够保存至少2个月。被荧光素标记后的IgG的激发和发射波长分别为495nm和520nm。
原理
产品优势
1)荧光素标记的产品可以在大约2小时内制备。
2)可以标记分子量为50,000或更高的蛋白质。
3)可以标记50至200μg的蛋白质。
4)可以通过使用过滤管的分离操作以高回收率获得标记物质。
5)荧光素标记的物体可以与所附的存储溶液一起存储。
荧光特性
操作步骤
使用注意事项:
1. 用该试剂盒标记的蛋白质的分子量要>50,000。
2. 在标记过程中,IgG或者Fluorescein -IgG标记物始终存在于Filtration tube的滤膜上。
3. 如果IgG溶液中含有分子量>10,000的其他蛋白质,如BSA或明胶时,在使用该试剂盒标记前,先要纯化IgG溶液。IgG溶液能够用IgG Purification Kits(不包含于本试剂盒 中)来纯化。
4. 如果IgG溶液含有小的不溶物,离心后取上清液来进行标记。
5. 如果长时间不使用,建议您把试剂盒中的标记试剂NH2-reactive fluorescein放在-20℃冰箱中保存,不需要充氮气,可以更好地保持标记试剂的活性,但请不要把其它试剂和过滤管放到-20℃冰箱中,仍请放在0-5℃冰箱中保存。
a) 样品溶液的体积不应超过100μl。如果抗体浓度低于1mg/ml,重复步骤1和2直至总的IgG聚积量达到100 μg。如果聚积过程中滤液的体积超过400μl,则在进行后续的离心操作前应除去滤液。
b) 如果溶液在离心后仍然残留在膜上,可以再离心5 min或者适当增加转速直至膜上没有残留液体。
c) NH2-Reactive Fluorescein Dye在管子的底部,向管底加入10μl DMSO,吹打数次使其溶解,如果没有DMSO的话,可以用乙醇来替代。
d) 如果IgG的量为200μg,在步骤4时加入所有的NH2-Reactive Fluorescein Dye溶液。
e) 并不一定要使用WS Buffer来回收标记产物,可以选择任何适合于该实验的缓冲液来替代。
标记率计算
计算标记率:
1分子蛋白质上结合的荧光素的数量 (标记率) 的计算方法:将标记的蛋白质溶液用5倍的中性缓冲液稀释,分别测定在280nm和各个荧光染料的最大吸收波长处的吸光度,采用以下公式计算。
* 如果是IgG,摩尔吸光系数ε=216,000。
* 荧光染料在WS缓冲液中的摩尔吸光系数参见下表:
常见问题Q&A
Q1:能够用这个试剂盒标记其他蛋白质吗? |
A:可以。只要标记分子的分子量>50,000。 |
Q2:标记蛋白之前是否必须使用过滤管? |
A:如果蛋白溶液中不含有带有活性氨基的小分子且蛋白浓度在10mg/ml或者70μM左右时,可以不使用过滤管来过滤,只需要将10μl 样品溶液和90μl Reaction Buffer以及8μl NH2-reactive Fluorescein(由步骤3所得)混合并按照操作说明上的方法做从步骤4开始的后续试验。 |
Q3:能够使用这个试剂盒标记寡核苷酸或者寡肽吗? |
A:不行。寡核苷酸或者寡肽可能因为分子量太小而不能存在于滤膜上。 |
Q4:用该试剂盒所能标记的IgG的最小量是多少? |
A:IgG的最小量为10μg。IgG的量在10μg-100μg之间时,标记比率是相同的。 |
Q5:标记产物能保存多久? |
A:在4℃下能够保存2个月。如果需要保存更久,可以添加等量的丙三醇,并在-20℃下存放。但是,还要注意样品自身是否稳定。 |
参考文献
1) M. Hiyoshi, S. Suzu, Y. Yoshidomi, R. Hassan, H. Harada, N. Sakashita, H. Akari, K. Motoyoshi and S. Okada, “Interaction between Hck and HIV-1 Nef Negatively Regulates Cell Surface Expression of M-CSF Receptor”, Blood, 2008, 111(1), 243. |
2) W. Aung, A. Tsuji, H. Sudo, A. Sugyo, T. Furukawa, Y. Ukai, Y. Kurosawa and T. Saga, “Immunotargeting of Integrin α6β4 for Single-Photon Emission Computed Tomography and Near-Infrared Fluorescence Imaging in a Pancreatic Cancer Model”, Molecular Imaging, 2016, 15, 1. |
3) A. Shinya, K. Yamamoto, M. Kurata, S. Abe-Suzuki, R. Horii, F. Akiyama and M. Kitagawa, “Targeting MCM2 function as a novel strategy for the treatment of highly malignant breast tumors”, Oncotarget., 2015, 6, (33), 34892. |
4) K.M. Nishida, T.N. Okada, T. Kawamura, T. Mituyama, Y. Kawamura, S. Inagaki, H. Huang, D. Chen, T. Kodama, H. Siomi and M.C. Siomi, “Functional involvement of Tudor and dPRMT5 in the piRNA processing pathway in Drosophila germlines”, EMBO J.., 2009, 28, (24), 3820. |
5) P.G. Sreekumar, R. Kannan, M. Kitamura, C. Spee, E. Barron, S.J. Ryan and D.R. Hinton, “αB crystallin is apically secreted within exosomes by polarized human retinal pigment epithelium and provides neuroprotection to adjacent cells”, PLoS ONE., 2010, 5, (10), e12578. |
6) R. Asano, T. Kumagai, K. Nagai, S. Taki, I. Shimomura, K. Arai, H. Ogata, M. Okada, F. Hayasaka, H. Sanada, T. Nakanishi, T. Karvonen, H. Hayashi, Y. Katayose, M. Unno, T. Kudo, M. Umetsu and I. Kumagai, “Domain order of a bispecific diabody dramatically enhances its antitumor activity beyond structural format conversion: the case of the hEx3 diabody”, Protein Eng. Des. Sel.., 2013, 26, (5), 359. |
7) R. Asano, I. Shimomura, S. Konno, A. Ito, Y. Masakari, R. Orimo, S. Taki, K. Arai, H. Ogata, M. Okada, S. Furumoto, M. Onitsuka, T. Omasa, H. Hayashi, Y. Katayose, M. Unno, T. Kudo, M. Umetsu and I. Kumagai, “Rearranging the domain order of a diabody-based IgG-like bispecific antibody enhances its antitumor activity and improves its degradation resistance and pharmacokinetics”, MAbs., 2014, 6, (5), 1243. |
8) R. Asano, K. Ikoma, I. Shimomura, S. Taki, T. Nakanishi, M. Umetsu and I. Kumagai, “Cytotoxic enhancement of a bispecific diabody by format conversion to tandem single-chain variable fragment (taFv): the case of the hEx3 diabody”, J. Biol. Chem.., 2011, 286, (3), 1812. |
9) T. Toyotome, M. Yamaguchi, A. Iwasaki, A. Watanabe, H. Taguchi, L. Qin, H. Watanabe and K. Kamei, “Fetuin A, a serum component, promotes growth and biofilm formation by Aspergillus fumigatus”, Int. J. Med. Microbiol.., 2012, 302, (2), 108. |
10) W. Ma, V. Schubert, M. M. Martis, G. Hause, Z. Liu, Y. Shen, U. Conrad, W. Shi, U. Scholz, S. Taudien, Z. Cheng and A. Houben, “The distribution of α-kleisin during meiosis in the holocentromeric plant Luzula elegans”, Chromosome Res.., 2016, 24, (3), 393. |
11) Y. Yokoi, K. Nakamura, T. Yoneda, M. Kikuchi, R. Sugimoto, Y. Shimizu and T. Ayabe, “Paneth cell granule dynamics on secretory responses to bacterial stimuli in enteroids”, Sci. Rep.., 2019, 9, 2710. |
12) Y.J. Lee, S.R. Han, N.Y. Kim, S.H. Lee, J.S. Jeong and S.W. Lee, “An RNA aptamer that binds carcinoembryonic antigen inhibits hepatic metastasis of colon cancer cells in mice”, Gastroenterology., 2012, 143, (1), 155. |
13) C. F.O.Hoya, K. Kushiro, Y. Yamaoka, A. Ryo and M. Takai, ‘Rapid multiplex microfiber-based immunoassay for anti-MERS-CoV antibody detection’, Sens Biosensing Res., 2019,10.1016/j.sbsr.2019.100304. |
14) H. Takeuchi, N Sasaki, S. Yamaga, M. Kuboniwa, M. Matsusaki and A. Amano, “Porphyromonas gingivalis induces penetration of lipopolysaccharide and peptidoglycan through the gingival epithelium via degradation of junctional adhesion molecule 1”, PLoS Pathog., 2019, 15, (11), e1008124. |
15) Y. Yanase, Y. Matsuo, T. Kawaguchi, K. Ishii, A. Tanaka , K. Iwamoto , S. Takahagi and M.Hide, “Activation of Human Peripheral Basophils in Response to High IgE Antibody Concentrations without Antigens”., Int J Mol Med Sci, 2019, 20, (1), 45. |
16) M. Yashiro, M. Ohya, T. Mima, Y. Nakashima, K. Kawakami, T. Sonou, K. Tatsuta, Y. Yamano, S. Negi and T. Shigematsu, “Excessive ADAM17 activation occurs in uremic patients and may contribute to their immunocompromised status.”, Immun Inflamm Dis., 2020, 10.1002/iid3.298. |
17) H Fujishiro, H Yamamoto, N Otera, N Oka, M Jinno and S. Himeno, “In vitro Evaluation of The Effects of Cadmium on Endocytic Uptakes of Proteins into Cultured Proximal Tubule Epithelial Cells.”, Toxics, 2020, 8,10.3390/toxics8020024 |
18) Y. Liu, Y. Liu, X. Zheng, L. Zhao and X. Zhang, “Recapitulating and Deciphering Tumor Microenvironment by Using 3D Printed Plastic Brick–Like Microfluidic Cell Patterning”, Adv Healthc Mater, 2020, 9, (6), 1901713. |
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容 量 | メーカー希望 小売価格 |
富士フイルム 和光純薬 |
---|---|---|
3 samples | ¥26,000 | 347-90911 |
サンプル量 | 50-200 µg |
---|---|
所要時間 | 2時間 |
標識部位 | -NH2 |
検出方法 | 顕微鏡・FCM |
蛍光特性 | [Ex:500, Em:525] |
・分子量50,000以上のタンパク質が標識できる。 ・Filtration Tubeを用いた分離操作により高い回収率で標識体が得られる。 ・付属の保存溶液でフルオレセイン標識体の保存ができる。 |
3 samples | ・NH2-Reactive Fluorescein ・WS Buffer ・Reaction Buffer ・Filtration Tube |
3 tubes 4 ml x1 500 μl x1 3 tubes |
---|
Fluorescein Labeling Kit – NH2の使い方
1) 約2時間でフルオレセイン標識体が調製できる。
2) 分子量50,000以上のタンパク質が標識できる。
3) 50~200 μgのタンパク質を標識可能である。
4) Filtration Tubeを用いた分離操作により高い回収率で標識体が得られる。
5) 付属の保存溶液でフルオレセイン標識体の保存ができる。
1) M. Hiyoshi, S. Suzu, Y. Yoshidomi, R. Hassan, H. Harada, N. Sakashita, H. Akari, K. Motoyoshi and S. Okada, "Interaction between Hck and HIV-1 Nef Negatively Regulates Cell Surface Expression of M-CSF Receptor", Blood, 2008, 111(1), 243.
2) W. Aung, A. Tsuji, H. Sudo, A. Sugyo, T. Furukawa, Y. Ukai, Y. Kurosawa and T. Saga, "Immunotargeting of Integrin α6β4 for Single-Photon Emission Computed Tomography and Near-Infrared Fluorescence Imaging in a Pancreatic Cancer Model", Molecular Imaging, 2016, 15, 1.
3) A. Shinya, K. Yamamoto, M. Kurata, S. Abe-Suzuki, R. Horii, F. Akiyama and M. Kitagawa, "Targeting MCM2 function as a novel strategy for the treatment of highly malignant breast tumors", Oncotarget., 2015, 6, (33), 34892.
4) K.M. Nishida, T.N. Okada, T. Kawamura, T. Mituyama, Y. Kawamura, S. Inagaki, H. Huang, D. Chen, T. Kodama, H. Siomi and M.C. Siomi, "Functional involvement of Tudor and dPRMT5 in the piRNA processing pathway in Drosophila germlines", EMBO J.., 2009, 28, (24), 3820.
5) P.G. Sreekumar, R. Kannan, M. Kitamura, C. Spee, E. Barron, S.J. Ryan and D.R. Hinton, "αB crystallin is apically secreted within exosomes by polarized human retinal pigment epithelium and provides neuroprotection to adjacent cells", PLoS ONE., 2010, 5, (10), e12578.
6) R. Asano, T. Kumagai, K. Nagai, S. Taki, I. Shimomura, K. Arai, H. Ogata, M. Okada, F. Hayasaka, H. Sanada, T. Nakanishi, T. Karvonen, H. Hayashi, Y. Katayose, M. Unno, T. Kudo, M. Umetsu and I. Kumagai, "Domain order of a bispecific diabody dramatically enhances its antitumor activity beyond structural format conversion: the case of the hEx3 diabody", Protein Eng. Des. Sel.., 2013, 26, (5), 359.
7) R. Asano, I. Shimomura, S. Konno, A. Ito, Y. Masakari, R. Orimo, S. Taki, K. Arai, H. Ogata, M. Okada, S. Furumoto, M. Onitsuka, T. Omasa, H. Hayashi, Y. Katayose, M. Unno, T. Kudo, M. Umetsu and I. Kumagai, "Rearranging the domain order of a diabody-based IgG-like bispecific antibody enhances its antitumor activity and improves its degradation resistance and pharmacokinetics", MAbs., 2014, 6, (5), 1243.
8) R. Asano, K. Ikoma, I. Shimomura, S. Taki, T. Nakanishi, M. Umetsu and I. Kumagai, "Cytotoxic enhancement of a bispecific diabody by format conversion to tandem single-chain variable fragment (taFv): the case of the hEx3 diabody", J. Biol. Chem.., 2011, 286, (3), 1812.
9) T. Toyotome, M. Yamaguchi, A. Iwasaki, A. Watanabe, H. Taguchi, L. Qin, H. Watanabe and K. Kamei, "Fetuin A, a serum component, promotes growth and biofilm formation by Aspergillus fumigatus", Int. J. Med. Microbiol.., 2012, 302, (2), 108.
10) W. Ma, V. Schubert, M. M. Martis, G. Hause, Z. Liu, Y. Shen, U. Conrad, W. Shi, U. Scholz, S. Taudien, Z. Cheng and A. Houben, "The distribution of α-kleisin during meiosis in the holocentromeric plant Luzula elegans", Chromosome Res.., 2016, 24, (3), 393.
11) Y. Yokoi, K. Nakamura, T. Yoneda, M. Kikuchi, R. Sugimoto, Y. Shimizu and T. Ayabe, "Paneth cell granule dynamics on secretory responses to bacterial stimuli in enteroids", Sci. Rep.., 2019, 9, 2710.
12) Y.J. Lee, S.R. Han, N.Y. Kim, S.H. Lee, J.S. Jeong and S.W. Lee, "An RNA aptamer that binds carcinoembryonic antigen inhibits hepatic metastasis of colon cancer cells in mice", Gastroenterology., 2012, 143, (1), 155.
13) C. F.O.Hoya, K. Kushiro, Y. Yamaoka, A. Ryo and M. Takai, 'Rapid multiplex microfiber-based immunoassay for anti-MERS-CoV antibody detection', Sens Biosensing Res., 2019,10.1016/j.sbsr.2019.100304.
14) H. Takeuchi, N Sasaki, S. Yamaga, M. Kuboniwa, M. Matsusaki and A. Amano, "Porphyromonas gingivalis induces penetration of lipopolysaccharide and peptidoglycan through the gingival epithelium via degradation of junctional adhesion molecule 1", PLoS Pathog., 2019, 15, (11), e1008124.
15) Y. Yanase, Y. Matsuo, T. Kawaguchi, K. Ishii, A. Tanaka , K. Iwamoto , S. Takahagi and M.Hide, "Activation of Human Peripheral Basophils in Response to High IgE Antibody Concentrations without Antigens"., Int J Mol Med Sci, 2019, 20, (1), 45.
16) M. Yashiro, M. Ohya, T. Mima, Y. Nakashima, K. Kawakami, T. Sonou, K. Tatsuta, Y. Yamano, S. Negi and T. Shigematsu, "Excessive ADAM17 activation occurs in uremic patients and may contribute to their immunocompromised status.", Immun Inflamm Dis., 2020, 10.1002/iid3.298.
17) H Fujishiro, H Yamamoto, N Otera, N Oka, M Jinno and S. Himeno, "In vitro Evaluation of The Effects of Cadmium on Endocytic Uptakes of Proteins into Cultured Proximal Tubule Epithelial Cells.", Toxics, 2020, 8,10.3390/toxics8020024
18) Y. Liu, Y. Liu, X. Zheng, L. Zhao and X. Zhang, "Recapitulating and Deciphering Tumor Microenvironment by Using 3D Printed Plastic Brick–Like Microfluidic Cell Patterning", Adv Healthc Mater, 2020, 9, (6), 1901713.
Labeling Kitで1次抗体を直接標識する利点を教えてください。
はじめて抗体標識をされる方を対象としたプロトコルを作成しております。
カスタマーサポートの視点から直接標識法の利点や実施例等を記載しておりますので、ご参照下さい。
下記リンクよりダウンロード可能です。
「はじめての抗体標識プロトコル ~カスタマーサポートの視点から~」
サンプル溶液中の共存物は反応に影響しますか?
共存物の種類により影響することがあります。
溶液中にどのような物質が含まれるかを確認の上、状況に応じてラベル化に用いるサンプルの精製を行い、標識反応にご使用ください。
<高分子:分子量1万以上>
影響する可能性があります。
BSAやゼラチンなどアミノ基をもつ化合物が含まれると、抗体への標識効率が低下します。また、高分子のためFiltration Tubeでも除くことができません。また、アミノ基を持たない化合物でも、高分子の不純物が多いとフィルターの目詰まりの原因になり、標識・精製操作に支障がでる可能性もあります。反応に使用する前に別途精製を行ってください。
*本製品に限らず他のLabeling kit に関しても同様の注意が必要です。
低分子のタンパク質(分子量50,000以下)に標識する場合の方法を教えて下さい。
キット付属のフィルトレーションチューブは分画分子量30Kの限外濾過フィルターのため、余裕をもって50,000以上のタンパク質のご使用を推奨しております。
分子量50,000以下のタンパク質を標識される場合は、下記のような分画分子量の小さい限外濾過フィルターに変更して頂くことで、低分子のタンパク質でもラベル化可能でございます。
——————————————
PALL社 ナノセップ 3K 製品No.OD003C33
PALL社 ナノセップ 10K 製品No.OD010C33
——————————————
キット同梱のフィルターを用いた場合に比べ遠心に時間を要することがございますので遠心時間はご検討下さい。
標識後、フィルトレーションチューブを遠心してもメンブレン上に液が残る。
(1)メンブレンを目視で確認した際、メンブレンカップの淵にうっすら液が残る程度であれば、次の操作に進んで下さい。
メンブレン上に液が残っていたり、メンブレンカップを傾けて回転させたとき、液が垂れてくるようであれば、さらに遠心を8,000g で15分~30分程度行って下さい。
(2)1)の遠心操作後もメンブレン上に液が残る場合は、標識体が凝集していないか確認してください。
抗体やタンパク質自身の性質によりますが、低分子標識剤を標識することで抗体やタンパク質の疎水性が増し、凝集する場合がございます。
標識体に凝集が見られる場合は、一度別のマイクロチューブに移し、遠心し上澄みをご使用ください。(抗体・タンパク質の回収量は低下いたします。)
上記でも解決しない場合は、小社カスタマーサポートまでお問い合わせください。
※フィルターの目詰まりが疑われる場合は、メンブレンフィルターを新しいものに交換すると解決する場合がございます。
代替品: PALL社製 ナノセップ 30K (メーカーコード:OD030C33)
このキットではどのようなものが標識できますか?
分子量が「50,000以上」で反応性のアミノ基(NH2)を有している化合物(抗体、蛋白質など)であれば標識できます。
量は「50~200μg」が対象となります。
*キットに添付しているFiltration Tubeのサイズが30Kのため、低分子の化合物は精製できません。
モル吸光係数から標識率を算出する時に [0.22]がかけてありますが、この数値は何でしょうか?
Fluorescein は280nmと500nmに吸収があり、280nm/500nmの比が[0.22]です。
Fluoresceinの標識率の式は下記の通りです。
60,000は500nmでのFluoresceinのモル吸光係数で、右辺の分子はFluoresceinのモル数になります。
280nmの吸光度は「タンパク質の吸光度+Fluoresceinの吸光度」となっていますので、500nmの吸光度に0.22を掛けたもの引くことにより、タンパク質のみの吸光度が求まります。
この吸光度をモル吸光係数で割ることで、分母はタンパク質のモル数となります。
保存条件: 冷蔵 , 取扱条件: 吸湿注意 |
この製品に関連する研究では、下記の関連製品も使われています。
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容 量 | メーカー希望 小売価格 |
富士フイルム 和光純薬 |
---|---|---|
3 samples | ¥27,300 | 343-91851 |
サンプル量 | 10 µg (lgG) |
---|---|
所要時間 | 30分以内 |
標識部位 | -NH2 |
検出方法 | 顕微鏡・FCM |
蛍光特性 | [Ex:500, Em:525] |
3 samples | ・Reactive Fluorescein ・Reaction Buffer ・Stop Solution |
x 3 100 μl x 1 100 μl x 1 |
---|
1) 少量の抗体 (10 μg) でフルオレセイン標識抗体を調製できる。
2) 抗体と混ぜるだけで標識できる。
3) 30分以内に標識できる。
1) K. Miyazaki, J. Oyanagi, D. Hoshino, S. Togo, H. Kumagai and Y. Miyagi, Cancer cell migration on elongate protrusions of fibroblasts in collagen matrix.', Sci Rep., 2019, 9, (1), 292.
抗体溶液中に含まれる添加剤は標識反応に影響しますか?
抗体溶液中の添加剤によっては影響を受ける場合がございますので、ご使用前に必ず取り扱い説明書中の注意事項をご確認ください。
標識にはどのようなサンプルが使用できますか?
10 μgのIgG抗体をご使用頂けます。
使用可能な抗体のクラスには、どのようなものがありますか?
本製品はIgG抗体へ標識するよう最適化しています。IgG以外のクラス(IgMやIgA等)では標識実績はございません。
直接標識することで免疫染色に影響がみられた抗体種はありますか?
抗体の種類によっては直接標識法(1次抗体法)により抗原認識能を失うことがあります。抗原認識部位またはその近傍にアミノ基が存在した場合に、その部分に標識体が結合することで抗原認識能が低下することが考えられます。
弊社で確認した抗体のうち、直接標識することで免疫染色に問題が生じた抗体をご案内いたします。
抗体名 | 由来 | クローナリティ |
---|---|---|
Anti-VDAC1 antibody | Rabbit | ポリクローナル |
Anti-EEA1 antibody | Rabbit | ポリクローナル |
Anti-α-actin antibody | Mouse | モノクローナル |
Anti-LAMP 1 antibody | Mouse | モノクローナル |
Anti-Calnexin Antibody | Rabbit | ポリクローナル |
非特異な染色やバックグラウンドが見られます。どうしたらいいですか?
抗体によっては、非特異な染色やバックグラウンドが見られることがあり、Stop solutionの添加量を増やすことで改善する場合があります。Stop solutionの添加量は上限30μlを目安にご検討ください。改善されない場合は、直接標識法(1次抗体法)により抗抗原認識能が低下した可能性が考えられます。「直接標識することで免疫染色に影響がみられた抗体種はありますか?」をご参照ください。
保存条件: 冷蔵 , 取扱条件: 吸湿注意 |
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