实验例：ES细胞群内部的细胞膜染色
将小鼠ES细胞在涂有明胶的玻璃底皿中培养4天，并将获得的细胞群，用PlasMem Bright Green（200倍稀释）染色15分钟，并使用共聚焦显微镜（Zeiss：LSM710）中观察。
结果，细胞群内部的细胞膜也可以用PlasMem Bright Green可视化观察。
<观察条件>
细胞膜（PlasMem Bright Green【绿】）：Ex.488 nm/Em.500-560 nm.
*此实验例由庆应义塾大学医学院的石津 大嗣老师提供。
实验例：轴突神经细胞形态和线粒体定位的观察
由神经母细胞瘤细胞SH-SY5Y分化诱导的神经细胞，分别用PlasMem Bright Green (绿)、MitoBright LT Red (红)、Hoechst 33342 (蓝) 进行染色。可以鲜明的观察到细胞的形状以及轴突内的线粒体。
（比例尺：200 μm）
<观察条件>
细胞膜（PlasMem Bright Green【绿】）：Ex.488 nm/Em.500-560 nm。
线粒体（MitoBright LT Red【红】）：Ex.561 nm/Em.560-620 nm。
细胞核（Hoechst33342【蓝】）：Ex.405 nm/Em.400-450 nm。
<实验步骤>
（1）诱导神经芽细胞（SH-SY5Y）为神经细胞。
（2）去除上清液，添加使用培养基中稀释200倍的PlasMem Bright Green、Hoechst 33342（终浓度：5μg/ml）以及MitoBright LT Red（终浓度0.1 μmol/l）。
（3）培养30分钟。
（4）去除上清液，添加HBSS。
（5）使用荧光显微镜观察。
实验例：神经芽细胞（SH-SY5Y）中的线粒体检测
分别用PlasMem Bright Green (绿)、MitoBright LT Red (红)、Hoechst 33342 (蓝) 对神经母细胞瘤细胞SH-SY5Y进行染色，用共聚焦显微镜获得3D图像。可以鲜明的观察到细胞形态以及线粒体和细胞核的情况。
（比例尺：10 μm）
<观察条件>
细胞膜（PlasMem Bright Green【绿】）：Ex.488 nm/Em.500-560 nm。
线粒体（MitoBright LT Red【红】）：Ex.561 nm/Em.560-620 nm。
细胞核（Hoechst33342【蓝】）：Ex.405 nm/Em.400-450 nm。
<实验步骤>
（1）使用HBSS清洗SH-SY5Y细胞。
（2）添加使用培养基中稀释200倍的PlasMem Bright Green、Hoechst 33342（终浓度：5μg/ml）以及MitoBright LT Red（终浓度0.1 μmol/l）。
（3）培养10分钟。
（4）使用HBSS清洗细胞2次
（5）使用荧光显微镜观察。
实验例：脑源性小鼠神经母细胞瘤的延时成像
使用培养基中稀释200倍的PlasMem Bright Green，染色N1E-115细胞30分钟并进行延时成像时，可以清楚地观察到神经细胞内树突和突起中的变化。
<培养条件>
・细胞：N1E-115细胞（脑源性小鼠神经母细胞瘤）
・培养基：5％FBS，1％含谷氨酰胺的D-MEM（低葡萄糖）
・培养设备：35 mm 玻璃底皿
<拍摄条件>
・成像设备：带培养箱的荧光显微镜
・拍摄时间：1小时，拍摄间隔：2分钟
*此实验例由芝浦理工大学系统科学与工程学院的涌澤 充 様、福井 浩二教授提供。
实验例：与外泌体共染色
向PlasMem Bright Green染色的HeLa细胞中加入外泌体膜荧光染色试剂盒(ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Red)染色的外泌体。可以观察到，由活细胞的细胞膜产生的内体(Endosome)中的外泌体，以及没有摄入外泌体的内体。另外，即使在固定染色的细胞之后，也可以像活细胞一样使存在于细胞膜来源的囊泡（内体）中的外泌体可视化。
(比例尺：5 μm）
(比例尺：10 μm）
<观察条件>
细胞膜 (PlasMem Bright Green, 绿) Ex. 488 nm / Em. 500-560 nm。
外泌体 (ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Red, 红) Ex. 561 nm / Em. 560-620 nm。
<实验步骤>
（1）接种Hela细胞，24小时培养。
（2）去除上清液，添加使用培养基稀释的PlasMem Bright Green（100倍稀释）。
（3）培养10分钟。
（4）使用HBSS清洗细胞3次。
（5）添加175 μlMEM培养基与ExoSparkler Exosome Membrane Labeling Kit-Red染色过的Exosome溶液25 μl。
（6）在CO2培养箱中过夜培养。
（固定情况下）细胞使用HBSS清洗2次后添加4%PFA，培养15分钟后，使用HBSS清洗细胞2次。
（7）使用共聚焦显微镜观察
实验例：烟草BY2细胞的膜染色
用PlasMemBright Green (200倍稀释)染色烟草BY2细胞5分钟，清洗后每5分钟拍摄一次并进行长时间观察。实验中可以清晰的观察到BY2细胞膜的荧光以及细胞分裂所形成的细胞板。
(数据由名古屋大学栗原大辅老师友情提供)
<检测条件>
・转盘式共聚焦显微镜观察
・Ex: 488 nm; Em: 520/35 (502.5-537.5 nm)
・图中的时间按照00:00 (小时:分钟)表示
实验例：拟南芥根的染色
用PlasMemBright Green (200倍稀释)染色拟南芥根15分钟，采用Z轴景深连续拍照的方法进行荧光观察，可以清晰的观察到立体的细胞膜分布情况。
(数据由名古屋大学栗原大辅老师友情提供)
<检测条件>
・转盘式共聚焦显微镜观察，Z轴摄影
・Ex: 488 nm; Em: 520/35 (502.5-537.5 nm)
